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心臟電生理導(dǎo)管系統(tǒng)

  • 更新時間:2024-10-11
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簡要描述:傳統(tǒng)動物心電圖測量分析采用體表方式,雖操作簡單,但是存在測量位置影響大、測量精度不高等局限性,而心外膜表面電極測量心電圖操作極為復(fù)雜且創(chuàng)傷性大,實驗中較少采用

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產(chǎn)品詳情

傳統(tǒng)動物心電圖測量分析采用體表方式,雖操作簡單,但是存在測量位置影響大、測量精度不高等局限性,而心外膜表面電極測量心電圖操作極為復(fù)雜且創(chuàng)傷性大,實驗中較少采用。為解決這一難題,Scisence 提供微創(chuàng)的多電極電生理導(dǎo)管,設(shè)計使研究者能夠?qū)ι镫娫谡麄€心臟的擴散過程進行更為深入的測量和分析。



電生理導(dǎo)管系統(tǒng)由八電極電生理導(dǎo)管、電極分配盒及第三方生物電放大器及刺激器組成。


工作原理:八電極電生理導(dǎo)管上的每對電極均獨立受控于電極分配盒,電極分配盒通過 2mm 針式連接線與第三方生物電放大器或刺激器相連,通過采集對應(yīng)的電極對引導(dǎo)的電信號數(shù)據(jù)。八電極電生理導(dǎo)管可用于心臟起搏,電信號記錄,進而用于心臟電生理的各方面研究。



電生理導(dǎo)管工作原理圖


心臟電生理導(dǎo)管需要插入大鼠、小鼠等動物的心臟內(nèi)部,測量和紀(jì)錄心房及心室的電生理信號:傳導(dǎo)時間、不應(yīng)期、希氏束電位、竇房結(jié)和房室結(jié)功能、心律失常的誘導(dǎo)。 



電生理導(dǎo)管系統(tǒng)特點
1. 微創(chuàng)八電極電生理導(dǎo)管,可監(jiān)測心內(nèi)各個部位的心電信號
2. 最多可同時引導(dǎo)心內(nèi) 4 個不同部位的心電信號,可觀察心電信號的擴散過程
3. 同一根導(dǎo)管可同時用于采集信號和給予刺激
4. 小鼠 1.1F,電極間距 0.5mm;大鼠 1.9F,電極間距 1.0mm;導(dǎo)管電極間距可定制
5. 聚酰胺材料制作,生物相容性好,兼顧靈活性和剛性,光滑而便于插入
6. 電極分配盒獨立控制每對電極,電極之間互不影響
7. 兼容多種第三方生物電放大器、刺激器、數(shù)據(jù)采集器,如美國 iWorx 的 iWire-BIOx、IX-RA-834 等
8. 動物實驗專用,不能用于人體


LabScribe 心電分析模塊

1. 測量心電圖 R-R、PR、QT、TP、QR、QTc 間隔,QRS、T、P 波寬,P、Q、R、S、T 波幅以及 ST段抬高等數(shù)據(jù);
2. 具有具體的分析模板,可準(zhǔn)確描繪各波起點、波寬、波幅等;
3. 客戶可定制專門的 ECG 模板,以滿足自身特殊實驗的需要;
4. 可從 R-R 間期、心率、噪音和活動性等方面來劃定異常值,從而使分析更準(zhǔn)確。

5. 可輕松提取源數(shù)據(jù)或平均數(shù)據(jù)作為圖片或文本導(dǎo)出;

6. 可選 ASCII 文本導(dǎo)入模塊將其他第三方設(shè)備采集的 ECG 數(shù)據(jù)導(dǎo)入本軟件進行分析;

 





LabScribe 進行心電分析



相關(guān)文獻(xiàn):

1. Luo X, et. al. “MicroRNA-26 governs profibrillatory inward-rectifier potassium current changes in atrial fibrillation." J Clin Invest. 2013 May 1; 123(5): 1939-51
2. De Jong AM, et. al. “Atrial remodeling is directly related to end-diastolic left ventricular pressure in a mouse model of ventricular pressure overload." PLoS One. 2013 Sep 6; 8(9): e72651
3. Guasch E, et. al. “Atrial fibrillation promotion by endurance exercise: demonstration and mechanistic exploration in an animal model." J Am Coll Cardiol. 2013 Jul 2;62(1):68-77
4. Cardin S, et. al. “Role for MicroRNA-21 in atrial profibrillatory fibrotic remodeling associated with experimental postinfarction heart failure." Circ Arrhythm Electrophysiol. 2012 Oct; 5(5): 1027-35
5. Iwasaki YK, et. al. “Determinants of atrial fibrillation in an animal model of obesity and acute obstructive sleep apnea." Heart Rhythm. 2012 Sep; 9(9): 1409-16.e1
6. Jiao KL, et. al. “Effects of valsartan on ventricular arrhythmia induced by programmed electrical stimulation in rats with myocardial infarction." J Cell Mol Med. 2012 Jun; 16(6): 1342-51
7. Zhou Y, et. al. “Matrine inhibits pacing induced atrial fibrillation by modulating I(KM3) and I(Ca-L)." Int J Biol Sci. 2012; 8(1): 150.
8. Benito B, et. al. “Cardiac arrhythmogenic remodeling in a rat model of long-term intensive exercise training." Circulation. 2011 Jan 4; 123(1): 13-22
9. Prestia KA, et al. “Increased Cell-Cell Coupling Increases Infarct Size and Does not Decrease Incidence of Ventricular Tachycardia in Mice." Front Physiol. 2011 Jan 31; 2(1): 1-7
10. Aubin MC, et al. “A high-fat diet increases risk of ventricular arrhythmia in female rats: enhanced arrhythmic risk in the absence of obesity or hyperlipidemia." J Appl Physiol. 2010 Feb; 108: 933-940
11. Lu Y, et al. “MicroRNA-328 contributes to adverse electrical remodeling in atrial fibrillation." Circulation. 2010 Dec; 122(23): 2378-87
12. Mathur N, et al. “Sudden infant death syndrome in mice with an inherited mutation in RyR2." Circ Arrhythm Electrophysiol. 2009 Dec; 2: 677-685



     

    

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